Al eliminar este gen con edición del genoma mediante CRISPR, las plantas son más resistentes al tizón tardío. Este efecto ya se comprobó en ensayos de campo.

Este avance podría reducir la necesidad de tratamientos químicos. También mejoraría la seguridad alimentaria en climas más secos y de condiciones variables

El gen, llamado Parakletos (que significa “auxiliar”), está vinculado al sistema inmunológico y reactivo al estrés de la planta.

Interactúa con otras proteínas sin realizar una función adicional. El descubrimiento fue publicado recientemente en la prestigiosa revista Nature Communications.

CRISPR

Durante años, los investigadores de la SLU han estudiado cómo hacer que las plantas de papa sean más resistentes al tizón tardío y otras enfermedades.

La técnica utiliza herramientas de edición genética, como CRISPR, para eliminar los genes de susceptibilidad (genes S) que hacen vulnerables a las plantas.

El equipo identificó un nuevo gen S que regula la sensibilidad de la planta a amenazas como hongos, bacterias, sal y sequía. Eliminar este gen fortalece las defensas de la planta y reduce la necesidad de tratamientos químicos.

Este método también podría preparar los cultivos para condiciones climáticas más desafiantes en el futuro.

«Sabemos que esto funciona en las papas y el tabaco, pero tenemos la esperanza de que también se pueda aplicar a otros cultivos», dice Erik Andreasson, profesor y director de la unidad de biología de la resistencia de la SLU. También es el autor principal del artículo reciente en Nature Communications. En comparación con el resto de la Unión Europea, Suecia está a la vanguardia en la investigación de nuevas técnicas genómicas, como la edición genética, para la protección de las plantas.

Los ensayos de campo no han mostrado consecuencias negativas por la eliminación de genes, según Andreasson. En este sentido, asegura que es poco probable que surjan problemas a largo plazo.

Sin embargo, dado que los ensayos solo se han realizado en un lugar y con una variedad de papa, se necesitan más investigaciones para confirmar su eficacia.

El siguiente paso es ampliar el proyecto “Papa resistente”, que cuenta con la participación de varias organizaciones agrícolas.

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El avance permitirá la aplicación en plantas de los sistemas de corta y pega genético, lo que abre la puerta a la obtención de nuevas variedades más productivas y nutritivas (agenciasinc.es)

La técnica de edición genómica CRISPR en plantas es aún un proceso laborioso que requiere tiempo, así como un gran despliegue experimental. Un nuevo trabajo del Instituto de Biología Molecular y Celular de Plantas ha logrado un avance para facilitar su aplicación, lo que abriría la puerta a nuevas variedades más productivas, nutritivas y resistentes.

Las nuevas tecnologías de edición de genomas derivadas de los sistemas CRISPR/Cas de bacterias y arqueas permiten editar a la carta la información genética de prácticamente todos los organismos. Esto está suponiendo una auténtica revolución dentro del campo de la biotecnología. Sin embargo, en el caso de las plantas, la edición genómica CRISPR/Cas sigue siendo un proceso laborioso que requiere tiempo y un gran despliegue experimental. Ahora, un nuevo trabajo lo haría más sencillo y rápido.

Un equipo de investigadores del Instituto de Biología Molecular y Celular de Plantas (IBMCP), centro mixto de la Universitat Politècnica de València (UPV) y el Consejo Superior de Investigaciones Científicas (CSIC), ha dado un nuevo paso para facilitar la edición genómica en plantas.

Su avance permitirá la aplicación en estos organismos de los sistemas de corta y pega genético CRISPR, lo que abre la puerta a la obtención de nuevas variedades más productivas y nutritivas, y más resistentes a plagas, patógenos y otras amenazas ambientales, como sequías o temperaturas extremas. El estudio ha sido publicado en la revista The Plant Journal.

“En las plantas, para expresar los reactivos necesarios para la edición deseada del genoma –habitualmente una nucleasa Cas y RNAs guía sintéticos (sgRNA)– hace falta llevar a cabo previamente una transformación genética del tejido vegetal, normalmente con la bacteria Agrobacterium tumefaciens. Una alternativa para agilizar este proceso consiste en utilizar una línea transformada con una nucleasa Cas, por ejemplo Cas9, y expresar los sgRNAs mediante un vector viral”, explica José Antonio Darós, investigador del CSIC en el IBMCP.

En el proceso de edición, la nucleasa Cas9 corta el ADN genómico en la posición deseada, guiada por los sgRNAs. Así, mientras Cas9 es un elemento común en todos los procesos de edición, los sgRNAs cambian según el gen que se quiera editar, lo que dificulta ese proceso.

Desarrollado un nuevo vector viral

La solución pasa por los vectores derivados de virus de plantas que, gracias a su capacidad de replicación y movimiento, pueden expresar altos niveles de sgRNAs en todos los tejidos de la planta en muy poco tiempo. Los investigadores del IBMCP han desarrollado un nuevo vector viral derivado del virus X de la patata que permite la expresión simultánea de varios sgRNAs de una manera muy sencilla y eficiente.

“Los resultados de nuestra investigación han mostrado cómo varios sgRNAs se pueden expresar mediante este vector viral sin necesidad de separarlos a través de señales para su procesamiento y, aun así, se alcanzan altos niveles de edición en todos los genes”, indica Mireia Uranga, una de las coautoras del trabajo.

Los investigadores del IBMCP han comprobado también que a partir de las semillas de las plantas infectadas por el vector se pueden regenerar nuevas plantas con su genoma perfectamente editado y que están libres del virus. “Este tipo de avances tecnológicos agilizará en gran medida la obtención de nuevas variedades de plantas con propiedades nutricionales y agronómicas mejoradas”, concluye Darós.

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